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      當前位置:首頁 > 新聞動態 > 蒂科生物2018春季血清* WB標準protocol

      蒂科生物2018春季血清* WB標準protocol

      2018-03-21 瀏覽次數:1312

      蒂科生物2018春季血清*  WB標準protocol

      蒂科生物2018春季血清*成功完成Western Blot檢測,必須滿足4個條件:

      1凝膠洗脫:轉移期間蛋白質必須從凝膠中洗脫出來,如果蛋白質還截留在凝膠中,將無法在膜上進行分析

      2吸附到膜上:在轉移過程中蛋白質必須吸附到膜上,如果蛋白不吸附,將無法在膜上進行分析

      3處理期間仍截留在膜上:在轉移后的處理過程中蛋白質必須保持吸附在印跡膜上

      4處理過程中可接近:被吸附的蛋白質必須能夠與檢測試劑接觸,如果蛋白質被掩蓋則無法檢測

      蒂科生物2018春季血清*,成功進行WB檢測,則設置合適正確的對照是*的,只要正確設置了這些對照,即可快速和準確的找到WB的問題所在,并保證實驗結果的準確性和特異性!一般需要設置的對照如下:

      l  陽性對照:明確表達檢測蛋白的組織或細胞,用于檢測抗體的工作效率

      l  陰性對照:明確不表達檢測蛋白組織或細胞,用于檢測抗體的特異性

      l  二抗對照:不加一抗,用于檢測二抗的特異性

      l  內參對照:檢測標本的質量和二抗系統

      l  空白對照:不加一抗和二抗;用于檢測膜的性質和封閉的效果

      蒂科生物2018春季血清*,WB檢測基本過程

      1、獲取細胞或組織裂解物

      1)根據檢測蛋白的位置選擇合適的裂解buffer

      蛋白位置

      推薦buffer

      全細胞

      NP-40 or RIPA

      胞漿(可溶性蛋白)

      Tris-HCl

      胞漿(骨架結合蛋白)

      Tris-Triton

      膜蛋白

      NP-40 or RIPA

      核蛋白

      RIPA or 核蛋白提取試劑盒

      線粒體蛋白

      RIPA or 線粒體分離試劑盒

      亦可購買商業化的蛋白提取試劑盒來保證標本制備的質量

      2)選擇合適的蛋白酶抑制劑,避免蛋白降解,從而保證檢測的準確性!

      2、蛋白定量

      常用的蛋白定量方法:Bradford assay,Lowry assay BCA assay。定量后,可根據情況將標本保存在-20°C /-80°C備用,進行免疫沉淀(IP)或者直接進行電泳分離蛋白

      3、電泳分離蛋白質

      蒂科生物2018春季血清*,根據待測蛋白狀態確定電泳條件:

      待測蛋白狀態

      凝膠條件

      上樣buffer

      電泳buffer

      Reduced - Denatured

      還原,變性

      β-巰基乙醇或DTT,含SDS

      SDS

      Reduced - Native

      還原,不變性

      β-巰基乙醇或DTT,不含SDS

      不含SDS

      Oxidized - Denatured

      不還原,變性

      不含β-巰基乙醇或DTT,含SDS

      SDS

      Oxidized - Native

      不還原,不變性

      不含β-巰基乙醇或DTT,不含SDS

      不含SDS

      根據待測蛋白分子量大小確定凝膠濃度

      蛋白分子量(kDa

      凝膠濃度(%)

      4-40

      20

      12-45

      15

      10-70

      12.5

      15-100

      10

      25-200

      8

      4、轉膜

      根據不同的檢測目的和待測蛋白的特性,選擇合適的膜類型。常用的轉移膜類型有:PVDF膜、硝酸纖維素膜(NC膜)和尼龍膜,其中PVDFNC膜的使用頻率zui高。各種膜的技術參數及比較如下:

       

      PVDF

      NC

      尼龍膜

      靈敏度和分辨率

      背景

      較高

      蛋白結合能力

      100-200ug/cm2(適用于SDS存在時與蛋白結合)

      80-100ug/cm2

      >400ug/cm2

      機械強度

      干的膜易脆

      軟而結實

      溶劑抗性

      使用前是否需要浸潤

      100%甲醛潤濕

      緩沖液潤濕

      緩沖液潤濕

      適用染色方法

      膠體金、麗春紅、酰胺黑、印度墨汁、考馬斯亮蘭

      膠體金、麗春紅、酰胺黑、印度墨汁

      不能用陰離子染料

      適用檢測方法

      顯色法、化學發光、熒光、放射性、化學熒光、快速免疫檢測

      顯色法、化學發光、熒光、放射性

      顯色、化學發光、放射性

      適用范圍

      普通蛋白WB、糖蛋白檢測、蛋白質測序、氨基酸分析、重復檢測

      普通蛋白WB、氨基酸分析、重復檢測。0.1um膜適用于7kDa以下蛋白

      低濃度小分子蛋白、酸性蛋白、糖蛋白、蛋白多糖、核酸檢測常用

      價格

      較低

      5、封閉

      去掉膜上多余的非特異性結合位點,降低背景。常用的封閉溶液有:含BSA或者脫脂奶粉的TBSTTBS

      6、一抗孵育

      一抗的選擇成功與否,是整個WB實驗成功的關鍵:選擇一抗有以下幾個注意點:

      l  選擇適合檢測標本種屬的一抗(說明書有驗證)

      l  選擇適用于WB實驗方法的一抗(說明書有驗證)

      l  選擇單克隆抗體或者經過親和純化的多克隆抗體

      一抗的保存和使用:

      l  根據說明書的要求條件進行抗體的保存;一般需要將抗體分裝后放入-20度保存,避免反復凍融。

      l  抗體的工作液現配現用,在4度保存不要超過2

      l  根據說明書推薦濃度使用TBST稀釋一抗。由于實驗室條件和檢測方法等的差異,說明書推薦的稀釋比例只作參考,需要在說明書推薦的濃度周邊進行多個濃度梯度的實驗檢測,然后選擇信噪比的抗體濃度進行實驗。如果說明書沒有推薦濃度,可進行多個稀釋比例進行摸索*稀釋度(1:100-1:3000)。

      l  孵育條件:推薦4°C孵育過夜(一般大于18個小時),根據抗體親和力不同孵育時間有所區別

      7、二抗孵育

      根據說明書推薦濃度使用TBST稀釋一抗。如果說明書沒有推薦濃度,可進行多個稀釋比例進行摸索*稀釋度(1:1000-1:20000)。孵育條件一般為室溫1-2小時

      8、底物孵育

      選擇顯色或者化學發光底物。一般傾向于化學發光,靈敏度高且背景低,節省抗體用量

      9、結果分析和檢測

      凝膠成像系統檢測或者暗室曝光到膠片

      Note:從封閉開始,每步之間都需要用TBST進行洗滌,3次,每次5min

      蒂科生物2018春季血清*,WB技術要點和常見問題分析

      WB過程中常見的問題及可能原因分析

      問題

      可能原因

      驗證或解決辦法

      轉膜不充分

      膜沒有*均勻濕透

      使用100% methanol浸透膜

      靶蛋白分子量小于10,000

      選擇小孔徑的膜,縮短轉移時間

      靶蛋白等電點等于或接近轉移緩沖液pH

      可嘗試使用其他緩沖液如CAPS緩沖液(pH 10.5)或使用低pH值緩沖液如乙酸緩沖液

      甲醇濃度過高

      過高甲醇濃度會導致蛋白質與SDS分離,從而沉淀在凝膠中,同時會使凝膠收縮或變硬,從而抑制高分子量蛋白的轉移。降低甲醇濃度或者使用乙醇或異丙醇代替

      轉移時間不夠Thick gel

      對于厚的膠以及高分子量蛋白需要延長轉移時間

      背景高

      膜沒有*均勻濕透

      使用100% methanol浸透膜

      洗膜不充分

      增加洗液體積和洗滌次數

      阻斷不充分

      增加封閉液孵育時間,或者提高溫度。選擇合適的封閉試劑(脫脂奶粉,BSA,酪蛋白等)

      二抗濃度過高

      降低二抗濃度

      檢測過程中膜干燥

      保證充分的反應液,避免出現干膜現象

      曝光過度

      縮短曝光時間

      抗體與阻斷蛋白有交叉反應

      檢測抗體與阻斷蛋白的交叉反應性,選擇無交叉反應的封閉劑。洗滌液中加入Tween-20可減少交叉反應

      沒有陽性條帶

      抗體染色不充分

      增加抗體濃度,延長孵育時間

      酶失活

      直接將酶和底物進行混合,如果不顯色則說明酶失活了。選擇在有效期內、有活性的酶聯物

      標本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低

      設置陽性對照,如果陽性對照有結果,但標本沒有則可能是標本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低??煽紤]增加標本上樣量解決靶蛋白含量低的原因。

      試劑不匹配

      一抗與組織種屬,一抗與二抗或/和底物與酶系統之間不匹配。通過設置內參照可以驗證二級檢測系統的有效性

      一抗失效

      選擇在有效期內抗體;并選擇現配現用的工作液

      HRP抑制劑

      所用溶液和容器中避免含有疊N化Na

      有陽性條帶,但條帶比較弱

      抗體染色不充分

      增加抗體濃度,延長孵育時間

      酶活性降低

      直接將酶和底物進行混合,如果不顯色則說明酶失活了。選擇在有效期內、有活性的酶聯物

      標本中靶蛋白含量太低

      增加標本上樣量。

      洗膜過度

      縮短洗滌時間

      HRP抑制劑

      所用溶液和容器中避免含有疊N化Na

      抗體活性降低

      選擇在有效期內的抗體,工作液現配現用,避免長時間放置

      蛋白轉移不充分

      見上述

      封閉過度

      減少封閉劑的量或縮短時間;換用不同封閉劑類型

      曝光時間過短

      延長曝光時間

      HRP抑制劑

      所用溶液和容器中避免含有疊N化Na

      條帶位置(大?。┎粚?;或有非特異性條帶

      二抗的非特異性結合

      增加一個對照:不加一抗,其他操作過程不變,即可驗證背景是否由二抗系統來源。選擇其他二抗(特異性更強的,只針對重鏈的)

      一抗的特異性不夠

      使用單克隆或者親和純化的抗體,保證抗體的特異性

      蛋白降解

      使用新鮮制備的標本,并使用蛋白酶抑制劑

      二聚體或多聚體存在

      增加蛋白質變性過程及強度

      抗體濃度過高

      降低抗體(一抗、二抗)濃度,可以減少非特異性條帶

      蛋白上樣量過大

      降低上樣量

      背景有斑點

      封閉劑中有聚集體

      使用前過濾封閉試劑

      HRP耦聯二抗中有聚集體

      過濾二抗試劑,去除聚集體

      膜上出現反像(暗背景上白色帶)

      HRP含量過高

      降低酶聯二抗的濃度

       

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